Rambler's Top100 rasp.gif ru.counter?id=211891
Genetics - Home Page

"Search Jablonski's MCA/MR Syndromes Database"
www.scirus.com
"PubMed"


Genetics
Рефераты


Genetic Center
Filatov's Child Clinical Hospital © 2001-2004
Vladimir Solonichenko MD, Clinical Geneticist,©
E-mail:


версия для печати  

        ДЕТЕРМИНАЦИЯ И ДИФФЕРЕНЦИАЦИЯ ПОЛА


                     Sex Determination and Differentiation

        David T. MacLaughlin, Ph.D., and Patricia K. Donahoe, M.D.


                                      N Engl J Med 2004; 350 (4):367-78


                                         Референт: Солониченко В.Г.

Опубликовано 21 февраля 2005 года


Портал «Русский медицинский сервер»: http://www.rusmedserv.com

Cайт «Генетика человека»: http://genetics.rusmedserv.com/

Адрес размещения материала: http://www.genetics.rusmedserv.com/refer/article_46.html




Детерминация половых признаков эмбриона определяется набором половых хромосом, гены которых путем многих молекулярных воздействий обуславливают развитие герминативных клеток, их миграцию в область «урогенитального гребня» и последующей дифференциации в тестис ( при наличии Y-хромосомы – 46,ХY ) или яичник ( при наличии второй Х-хромосомы – 46,ХХ ). После стадии детерминации гонад начинается процесс половой дифференциации, который определяется поло-специфической чувствительностью периферических тканей к гормонам мужских или женских гонад. Все эти процессы детерминируются большим числом генов, многие из которых стали известны из экспериментов на мышах ( дикие формы или генетически модифицированные животные ). Некоторые из этих мутаций являются причиной важных клинических синдромов ( Табл.1 и Рис. 1 ). Знание молекулярных механизмов половой детерминации и дифференциации чрезвычайно важно для диагноза и лечения этих заболеваний.


                         ГЕРМИНАТИВНЫЕ КЛЕТКИ


Примордиальные герминативные клетки, которые в конечном итоге локализуются в гонадах, впервые возникают в проксимальном эпибласте ( наружный эктодермальный листок ) откуда они мигрируют вдоль стенки первичной кишки в специфическую область эмбриона – урогенитальный гребень – место будущей гонады ( Рис.2 ). Два гена - Fragilis и Stella - ответственны за дифференцировку примордиальных герминативных клеток (2).

При миграции клеток к урогенитальному гребню влияние гена Fragilis уменьшается (уменьшается экспрессия гена), а влияние гена Stella отстается неизменным. Тем не менее, точные механизмы влияния этих генов на судьбу герминативных клеток остаются неясными. Fragilis ответственен за продукцию особого интерферон-индуцибельного трансмембранного белка, который участвует в антипролиферативных процессах и в механизмах адгезии.

Stella транскрибирует новый белок, структура которого позволяет предполагать участие в процессах процессинга РНК и модификациях хроматина (3). Только те зародышевые клетки, которые достигают области урогенитального гребня, дифференцируются и выживают; зародышевые клетки вне этой области подвергаются апоптозу и погибают. Однако некоторое число этих клеток апоптозу не подвергаются, и они позже могут стать источниками герминативных опухолей (4).


Мужские герминативные клетки

Паттерны пролиферации мужских и женских герминативных клеток различны. Зародышевые ХY клетки подвергаются митозу в течение миграции, но вскоре после достижения гонад, их рост останавливается и они остаются в пределах яичка в неподвижной фазе (G0) клеточного цикла до момента рождения, находясь под влиянием неизвестного запрещающего фактора ( фактор ингибитора мейоза ) секретируемого клетками Sertoli или миоидными клетками (5). После рождения мужские зародышевые клетки возобновляют клеточный цикл и подвергаются мейотическому делению, в результате которого возникают гаплоидные сперматогонии. Клетки Sertoli «лелеют» зародышевые клетки, которые заканчивают сперматогенез в период половой зрелости под влиянием гонадотропинов, фолликуло-стимулирующего и лютеинизирующего гормонов гипофиза. Важные для этого процесса белки секретируются клетками Sertoli : цитокины, müllerian ингибирующие вещества, ингибин, активин, и инсулин-подобный фактор роста 1 (6).


Женские герминативные клетки.

В процессе миграции герминативных ХХ клеток к месту будущего яичника они подвергаются митозу, затем клетки входят в первые фазы мейотического деления и останавливаются в профазе 1 мейоза до момента рождения ( Рис.2 ).

В этой стадии выжившие зародышевые клетки остаются окруженными единственным слоем соматических гранулезных клеток, где (как показано на мышах) стимулирующее аденилциклазой влияние поддерживает ооцит в этом примордиальном фолликулярном состоянии (7). Взаимодействие между ооцитами и окружением (гранулезные клетки) возникает в период полового созревания, когда «отдыхающие» примордиальные фолликулы стимулируются, превращаясь в первичные, вторичные, и преовуляторные фолликулы под влиянием фолликуло-стимулирующего гормона (8). В этом сложном процессе поддержания ооцита и контроля овуляцией участвует множество факторов: ооцит-дифференцирующий фактор 9 и BMP15, протеины 1,2 и 3 zona реllucida (9) и синергитически участвующие продукты гранулезных клеток.


Синдромы отсутствующих герминативных клеток и отношение

           герминативных клеток к стволовым клеткам


Герминативные клетки отсутствуют у мышей (piebald mice) мутантной линии (10) и в тестикулах «Sertoli-only» бесплодных мужчин с делецией длинного плеча Y-хромосомы – в регионах фактора азооспермии (azoospermia factor - AZF ), контролирующего сперматогенез (11). Недавнее определение ДНК последовательности Y-хромосомы (13) должно помочь в понимании структуры и функции этой хромосомы, особенно ее длинного плеча. В процессах миграции и выживания герминативных клеток участвует огромное множество факторов, которые детерминированы и генами аутосом, так, например, фактор стволовой клетки (14) кодируется локусом длинного плеча хромосомы 12. Кроме этого в этих процессах принимаю участие и другие факторы: фактор основного роста фибробластов (15), гликопротеид 130 (gp 130) и интерлейкин-6 (15,16).

Исследования по изоляции эмбриональных герминативных клеток и данные по стволовым эмбриональным клеткам показывают сходство в отношении последующей диффренцировки эмбриона (17,18). Таким образом, биология зародышевой клетки внесла свой вклад в развитие биологии стволовой клетки. В свою очередь, эти открытия привели к бесчисленным этическим противоречиям и необходимости гарантий относительно незаконного репродуктивного клонирования людей (19).


               Синдромы гонадального дисгенеза.


Исследования молекулярных событий, которые происходят в течение генетической детерминации пола, вместе с анализом фенотипов мышей, в которых ведущие гены были инактивированы соответствующей перекомбинацией (knockout mice), увеличили наше понимание патофизиологии некоторых клинических проявлений гонадального дисгенеза. Герминативные клетки мигрируют в область урогенитального гребня дифференцировка которого зависит от ряда факторов, включая факторы транскрипции: ген гомеобокса 2 (Emx2), GATA-4, Lim1, и Lim гомеобокс (Lhx9) ( Рис. 3 ). Мутации этих генов отвечают за дефекты гонад у мышей, однако сходные мутации у человека с аналогичными дефектами еще неизвестны. Тем не менее известны три гена, отвечающие за формирование урогенитального гребня у человека. Продукты супрессорного гена «опухоли Вильмса» (WT1) ответственны за формирование гонад и почек. Стероидогенный фактор (SF-1) и протеины врожденной Х-сцепленной гипоплазии надпочечников (DAX 1) ответственны за дифференцировку гонад и надпочеников ( Рис. 3 ).


                  АНОМАЛИИ ГОНАД И ПОЧЕК


Синдром Фразера и WT1 ( The Frasier Syndrome and WT1 )

Синдром Фразера характеризуется сочетанием дефекта гонад (полосковидные гонады) и нефротическим синдромом ( Рис.3 ). Заболевание возникает при кариотипе ХY с последующей реверсией пола. Экспериментальное исследование мутантных мышей (WT1-knockout mice) показывает, что ген вовлечен на ранних стадиях дифференцировки гонад и почек.

Альтернативный сплайсинг WT1 гена у мышей может продуцировать 24 изоформы белка. Мутации двух этих изоформ ( -KTS и +KTS аминокислотные триплетные варианты ) вызывают отчетливые клинические проявления и демонстрируют важность этих изменений в детерминации пола у человека (21).

При синдроме Frasier сайт WT1, который обычно сохраняет триплет KTS, видоизменен; поэтому, пациенты с синдромом производят только белок WT1 без KTS. Гонады, испытывающие недостаток в KTS уменьшают производство определяющего пол региона хромосомы Y (SRY) т.е. белка урогенитального гребня детерминирующего дифференцировку тестикул (21). Изучение пациентов с синдромом Frasier указывает, что вариант +KTS WT1 должен продуцироваться или в то же самое время или прежде, чем урогенитальный гребень производит SRY. Больные с кариотипом 46,ХY демонстрируют нефропатию и женский фенотип с сохраненными müllerian протоками.

Тяжесть нефропaтии вариабельна и зависит от мутации, которая разрушает область KTS; некоторые генотипы приводят к почечной недостаточности в младенчестве, тогда как другие вызывают более умеренные формы нефротического синдрома, совместимого с длительным выживанием. Пациенты с синдромом Frasier, которые имеют инактивирующую KTS мутацию, не восприимчивы к опухоли Вилмса.


Denys-Drash синдром и WT1

Мутации вне области KTS продуцируют белок WT1, который затрагивает позднюю дифференцировку гонад, приводя к синдрому Denys–Drash. При этом гонады дифференцируются более совершенно, чем гонады пациентов с синдромом Frasier. Таким образом эти больные имеют менее выраженные функциональные нарушения. Например, мужские гонады достаточно развиты, чтобы произвести müllerian ингибирующую субстанцию, которая гарантирует нормальный регресс müllerian протоков, но синтез тестостерона при этом нарушен. Хотя больные с кариотипом 46,ХY имеют в большинстве случаев преимущественно мужской фенотип, низкий уровень тестостерона может быть причиной мужского псевдогермафродитизма с различной степенью гипоспадии и крипторхизма (22). У пациентов с синдромом Denys–Drash отмечается высокая частота опухоли Вильмса и нефропатии с очаговым гломерулярным и мезангиальным склерозом с исходом в конечную стадию хронической почечной недостаточности и необходимостью трансплантации почек во второй или третьей декаде жизни.

Эти различные клинические признаки определяются различными молекулярными WT1 вариантами альтернативного сплайсинга KTS амнокислотного триплета. Изучение пациентов с -KTS мутацией показывает необходимость скринирующего хромосомного исследования девочек с очаговым гломерулярным склерозом или нефротическим синдромом с целью своевременной диагностики ХY реверсии пола. Кроме того, мальчики с гипоспадией и крипторхизмом и при наличии протеинурии, могут иметь Denys–Drash синдром (+KTS вариант) и должны быть проверены тщательно обследованы с целью выявления центральной клубочковой нефропaтии и опухоли Вилмса.


Опухоль Вильмса также может быть ассоциирована с аниридией, мочеполовыми аномалиями и умственной отсталостью – так называемый синдром WAGR (23). Этот сложный фенотип возникает в результате экспрессии ряда генов, расположенных проксимальнее гена WT1 локуса 11p13 (11 хромосома). Этот локус также ответственен за синдром Беквита-Видеманна, при котором также иногда возникает опухоль Вильмса (24).


             Гонадальные и надпочечниковые аномалии


Стероидогенный фактор

Другой важный ген в раннем гонадальном развитии – Sf-1 (25), кодирующий фактор транскрипции гомологичный рецептору стероидного гормона. Продукт этого гена может связываться с ДНК и таким образом регулирует экспрессию многих генов полового развития: müllerian ингибирующую субстанцию (21,26,27,28), все цитохром P-450 стероидные гидроксилазы (29), 3{beta}-гидроксистероид дегидрогеназу (30), которая регулирует синтез половых стероидных гормонов. У мышей мутация Sf-1-knockout является летальной в результате недоразвития надпочечниклов и гонад (31). У человека описана эта мутация с клиникой надпочечниковой недостаточности и реверсией пола при кариотипе 46,ХY (32,33). На мышах также показано, что ген WT-1 усиливает эффект гена Sf-1 (34)/


DAX1

Ген DAX1 кодирует протеин семейства ядерно-рецепторных белков (35). Мутации этого гена ассоциированы с врожденной гипоплазией надпочечников (36), синдромом надпочечниковой недостаточности, вследствии нарушенного формирования коры надпочечников и гипогонадотропным гипогонадизмом, как результат нарушения формирования гонад и гипофиза ( Рис.3 ). НА мышах показано, что ген DAX1 блокирует взаимодействие между генами WT1 и Sf-1 (34,37,38).


Возможная роль гена DAX1 в клинике смешанной дисгенезии гонад

Смешанная дисгенезия гонад (наличие асимметричных по полу гонад) часто сочетается с кариотипом 45,X/46,XY, однако в 40% случаев наблюдается кариотип 46,XY (39,40). Мозаицизм характеризуется наличием двух герминативных линий с различным хромосомным набором (41). Процент клеток с интактным XY генотипом диктует степень тестикулярной дифференциации. В классическом случае с одной стороны обнаруживаются полосковидная гонада, а с другой - дисгенетическое фибротическое яичко с нарушенной тубулярной структурой, с сохраненными müllerian протоками (дефицит müllerian ингибирующей субстанции) и неполной маскулинизацией в результате дефицита тестостерона. Не совсем ясно, почему гонадальная асимметрия является определяющим клиническим признаком, однако вероятно, это можно объяснить хромосомным мозаицизмом по половым хромосомам. Полосковидная гонада, напоминающая таковые при синдроме Тернера, по-видимому, является следствием потери Y-хромосомы. Фенотип больных со смешанной дисгенезией гонад может варьировать от практически нормальных при рождении, по сравнению с таковыми при чистой дисгенезии гонад (см. ниже), но с большой вероятностью к последующей ранней дегенерации с неопластической трансформацией (39,40). Менее тяжелый фенотип обнаруживается у пациентов с кариотипом 45,X/46,XY. Так в настоящее время этот кариотип находят у фенотипически нормальных мальчиков при проведении пренатальной хромосомной диагностики (41).


Х-сцепленный молекулярный продукт, подобный продукту гену DAX1 может играть роль в клинике смешанной дисгенезии гонад ( Рис. 3, и Рис. 4 ), так как DAX1 подавляет дифференцировку тестикул (35). Присутствие двух Х-хромосом , хотя и в различных клетках ( одна от 45, XO и другая от 46, XY ) могут быть достаточны для обеспечения чрезмерной экспрессии продукта DAX1. Это концепция подтверждается наблюдениями случаев синдрома Клайнфельтера где присутствие добавочной Х-хромосомы (47,XXY) обуславливает нарушение развития герминативных клеток (42).


SRY и SRY гомеобоксные гены при чистой дисгенезии гонад

Пациенты с чистой дисгенезией гонад характеризуются билатеральными полосковидными гонадами с нарушенной дифференцировкой. Анализ этих пациентов и эксперименты на животных показали, что ген SRY локализуется в дистальном регионе короткого плеча Y-хромосомы. Кроме того, выявлены гомологи этого гена на аутосомах – SRY homeobox gene SOX9. Важное значение этого гена как выключателя тестикулярной дифференцировки было окончательно подтверждено в опытах на мышах, когда «введение» этого гена ( Sry transgene ) в кариотип ХХ определял мужской фенотип у животных (43). Мутации этого гена были найдены в группе женщин с кариотипом 46,ХY и клиникой чистого гонадального дисгенеза. У пациентов обнаруживаются уменьшенные и фиброзные полосковидные гонады с 2-х сторон с трудно интерпритируемой гистологией гонад в отношении половой дифференцировки (44). Кампомелическая дисплазия – тяжелое врожденное заболевание, характеризующееся кариотипом 46,ХY с полной реверсией пола, полосковидными гонадами и выраженными скелетными деформациями. Описаны пациенты с этим заболеванием и транслокацией в дистальном регионе длинного плеча хромосомы 17 (17q), где расположен ген SRY homeobox SOX9 (45), а также с делецией короткого плеча 9 хромосомы (9p). Известны и другие гены связанные с реверсией пола у низших животных (46).

Гены SOX9 и SRY – совместно экспрессируются (коэкспрессия) только в мужском урогенитальном гребне, но не в женском эмбрионе – таким образом эти гены, при их наличии, участвуют в детерминации тестикул ( Рис. 3 ).

Факт того, что ген SOX9 активизирует транскрипцию müllerian ингибирующей субстанции (28,47) подтверждает мнение о критической роли этого гена в мужской гонадальной детерминации.


Истинный гермафродитизм

При этом состоянии у больных обнаруживаются как мужские, так и женские гонады - как с одной стороны, так и контрлатерально. Это заболевание редко встречается в Северной и Южной Америке, но весьма обычно в Африке и на Ближнем Востоке. Обычно отмечается асимметрия гонад и, в последующем, наружных половых органов. Тестикулы, яичники или овотестис присутствуют в различных комбинациях у пациентов с преимущественно кариотипом 46,XX (48). Фенотип наружных половых органов предопределяется доминирующей гонадой. При истинном гермафродитизме дисгенез гонад выражен менее сильно, чем у больных при смешанной дисгенезии гонад (49). Молекулярные события, приводящие к этому уникальному дефекту неясны, но несколько случаев были доказаны перемещением фрагмента, содержащего ген SRY к загадочному участку (cryptic site) на X-хромосоме (50).


Агенезия Mюллеровых протоков

Недифференцированная гонада обнаруживается и с мужскими и с женскими репродуктивными протоками. Парамезонефрос или Müllerian протоки, формируют матку, фаллопиевы трубы, и верхнее влагалище. Мезонефрос или Wolffian протоки формируют семявыносящий проток, семенные пузырьки и придаток яичка. Ген PAX2 транскрипционного фактора – общий ген, необходимый для нормального развития мезодермы обеих полов. Мутации этого гена у мыши приводят к агенезии производных Вольфовых и Мюллеровых протоков и агенезии почек (51). Мутация этого гена описана и у человека и приводит к возникновению похожего синдрома «почки-колобома» (52). Нарушение дифференцировки Мюллеровых протоков возникает у женщин с кариотипом 46,ХХ при синдроме Майера-Рокитанского-Кюстера-Хазера (Mayer-Rokitansky-Kuster-Hauser syndrome), который характеризуется сочетанием агенезии влагалища или полной Мюллеровой агенезией с аномалиями почек - от тазовой дистопии до агенезии почки (53). Генетической причиной этой патологии может быть инактивация гена Wnt-4. Продукт этого гена секретируется эпителием Мюллеровых протоков и индуцирет развитие Мюллеровой мезенхимы. Ранняя инактивация этого гена обуславливает нарушение формирования производных Мюллеровых протоков у обеих полов. Тем не менее, клинический эффект этой инактивации обнаруживается только у женщин. У нормальных мужчин регрессия Мюллеровых протоков происходит под влиянием Müllerian-ингибирующей субстанции. Сопутствующие дефекты почек летальны у мыши (54,55), но у человека эти аномалии почек часто совместимы с жизнью.

Гомеобоксные траскрипционные факторы 9,10,11, и 13 необходимы для нормального развития матки и влагалища – мутации этих генов ответственны за дефекты – атрезии матки и влагалища (56). Мутации аллеля Hoxa13 являются причиной синдрома «кисти-стопы-гениталии», при котором отмечаются дефекты кисти и стопы в сочетании с аномалиями влагалища, гипоспадией у мужчин, аномалиями позвоночника и экстрофией мочевого пузыря (57). С 1971 года известен тератоген диэтилстильбестрол (diethylstilbestrol) вызывающий нарушение развития Мюллеровых протоков (59). Известный факт супрессии диэтилстильбестролом других генов Wnt (Wnt-7a) и нарушение экспрессии Hox гена в ткани Мюллеровых протоков мышей доказывает наличие молекулярных взаимодействий этого тератогена с возникновением аденоматоза или карциномы влагалищы (59).


        Функциональные аномалии полового развития


После нормального морфологического развития гонад, мутации генов тестикулярных гормонов (müllerian-ингибирующая субстанция или рецепторы к этой субстанции) могут приводить к аномалиям с сохраненными Мюллеровыми протоками. Нарушение продукции тестостерона или мутации рецепторов тестостерона могут продуцировать 46,XY фенотипических женщин или фенотипических мужчин с различной степенью пониженной маскулинизации. С другой стороны – у пациентов с врожденной гиперплазией надпочечников гиперпродукция андрогенов может быть причиной женского псевдогермафродитизма при кариотипе 46,ХХ.


Синдром персистенции Мюллеровых протоков

Синдром возникает у мужчин с кариотипом 46,XY как редкая форма мужского псевдогермафродитизма в результате дефекта гена müllerian-ингибирующей субстанции (21,61,62,63) расположенного на хромосоме 19p13 (64) или гена его рецептора (type II receptor) на хромосоме 12q13 (65). У больных отмечается персистенция производных мюллеровых протоков и крипторхизм (одно-или двусторонний). Может отмечаться перекрестная тестикулярная эктопия с формированием грыжевых образований мошонки с вовлечением производных мюллеровых протоков и гонад (61,66).


Мужской псевдогермафродитизм

Другие практически значимые случаи мужского псевдогермафродитизма связаны с нарушением продукции андрогенов или с неадэкватной чувствительностью к андрогенам. В этих случаях формируется неполная маскулинизация у пациентов с кариотипом 46,XY. Клинический спектр варьирует от легкого нарушения маскулинизации (гипоспадия, крипторхизм) до полной реверсии пола ( Рис. 4 ). Андроген-рецепторные мутации (67,68) при синдроме андрогенной нечувствительности могут проявляться в виде крипторхизма ( яички интраабдоминальной локализации или в паховых каналах), но структуры Вольфовых протоков и наружные гениталии не в состоянии ответить на высокие уровни тестостерона и его метаболита дегидротестостерона. Адекватная секреция müllerian-ингибирующей субстанции при этом заболевании тем не менее заканчивается полной регрессией мюллеровых протоков.


Другие причины нарушенной вирилизации обусловлены дефектами синтеза тестостерона у пациентов с мутациями стероидогенных ферментов ответственных за конверсию холестерола в дигидротестостерон – стероидогенный регуляторный протеин (69), цитохром P-45 17-гидроксилаза (70), 3{beta}-гидроксистероид дегидрогеназа (71), и 17-кетостероид редуктаза (72). Эти дефекты являются причиной низкого уровня андрогенов. Мутации гена 5{alpha}-редуктаза тип 2 (73) определяют низкие уровни дигидротестостерона, который в свою очередь является причиной мошоночной или промежностной гипоспадии, prepenile scrota и увеличенной простатической маточки, что часто требует хирургической коррекции (73,74,75). Как и при синдроме андрогенной нечувствительности отмечается регрессия мюллеровых протоков, так как нормальные клетки Сертоли продуцируют нормальные или повышенные уровни müllerian-ингибирующей субстанции (76,77,78). Многие генетические мужчины с дефицитом 5{alpha}-редуктазы тип 2 рождаются с женскими наружными половыми органами и далее воспитываются как женщины.


Врожденная гиперплазия надпочечников

Заболевание обусловлено неспособностью надпочечника к достаточному синтезу кортизола (80), приводит к дополнительному синтезу тестостерона, что заканчивается выраженной маскулинизацией женщин с кариотипом 46, XX. Более тяжелые формы характеризуются снижением продукции альдостерона и потерей солей (80). Наиболее частые мутации гена фермента цитохром Р-450 21-гидроксилазы (81,82,83); менее частые (5%) - мутации 3{beta}-гидроксистероид дегидрогеназа (71). Наиболее редкие – 11{beta}-гидроксилазы дефицит, при которой может возникать пренатальная или постнатальная вирилизация (84,85). Недостаточное производство кортизола и, как следствие, нарушение обратных связей в гипоталамической-гипофизарно-надпочечной оси вызывает избыток кортикотропной продукции, что обуславливает гиперплазию коры надпочечников. Кроме того, предшественники кортизола активируют другие метаболические пути стероидов, что обуславливает высокие уровни надпочечных андрогенных стероидов, которые в свою очередь резко маскулинизируют женские гениталии ( Рис. 4 ). Яичники и мюллеровы протоки нормальные, так как на этой стадии развитие этих структур независимо от половых стероидов. Диагностика заболевания возможна на пренатальной стадии с возможностью ранней терапии матери (дексаметазон) с целью нормализации фенотипа наружных половых органов (80,83,86). Хирургическая коррекция может быть проведена в период младенчества (87).


Address reprint requests to Dr. MacLaughlin or Dr. Donahoe at the Pediatric Surgical Research Laboratories, Massachusetts General Hospital, Boston, MA 02114, or at maclaughlin@helix.mgh.harvard.edu or donahoe.patricia@mgh.harvard.edu.

References

  1. Donahoe PK, Crawford JD. Ambiguous genitalia in the newborn. In: Welch KJ, Randolph JG, Ravitch MM, O'Neill JA Jr, Rowe MI, eds. Pediatric surgery. 4th ed. Vol. 2. Chicago: Year Book Medical, 1986:1363-82.

  2. Saitou M, Barton SC, Surani MA. A molecular programme for the specification of germ cell fate in mice. Nature 2002;418:293-300.[CrossRef][ISI][Medline]

  3. Matova N, Cooley L. Comparative aspects of animal oogenesis. Dev Biol 2001;231:291-320.[CrossRef][ISI][Medline]

  4. Talerman A. Germ cell tumours. Ann Pathol 1985;5:145-157.[ISI][Medline]

  5. McLaren A, Buehr M. Development of mouse germ cells in cultures of fetal gonads. Cell Differ Dev 1990;31:185-195.[CrossRef][ISI][Medline]

  6. Matsumoto A. Spermatogenesis. Philadelphia: Lippincott-Raven, 1996:359-84.

  7. Mehlmann LM, Jones TL, Jaffe LA. Meiotic arrest in the mouse follicle maintained by a Gs protein in the oocyte. Science 2002;297:1343-1345.[Abstract/Full Text]

  8. Matzuk MM, Burns KH, Viveiros MM, Eppig JJ. Intercellular communication in the mammalian ovary: oocytes carry the conversation. Science 2002;296:2178-2180.[Abstract/Full Text]

  9. Prasad SV, Skinner SM, Carino C, Wang N, Cartwright J, Dunbar BS. Structure and function of the proteins of the mammalian Zona pellucida. Cells Tissues Organs 2000;166:148-164.[CrossRef][ISI][Medline]

  10. Evans EP, Breckon G, Peters J. An XXY mouse, the result of a rearrangement between one X and a Y chromosome. Genet Res 1990;56:15-19.[ISI][Medline]

  11. Ma K, Sharkey A, Kirsch S, et al. Towards the molecular localisation of the AZF locus: mapping of microdeletions in azoospermic men within 14 subintervals of interval 6 of the human Y chromosome. Hum Mol Genet 1992;1:29-33.[Abstract]

  12. Kuroda-Kawaguchi T, Skaletsky H, Brown LG, et al. The AZFc region of the Y chromosome features massive palindromes and uniform recurrent deletions in infertile men. Nat Genet 2001;29:279-286.[CrossRef][ISI][Medline]

  13. Skaletsky H, Kuroda-Kawaguchi T, Minx PJ, et al. The male-specific region of the human Y chromosome is a mosaic of discrete sequence classes. Nature 2003;423:825-837.[CrossRef][ISI][Medline]

  14. Dolci S, Williams DE, Ernst MK, et al. Requirement for mast cell growth factor for primordial germ cell survival in culture. Nature 1991;352:809-811.[CrossRef][ISI][Medline]

  15. Koshimizu U, Taga T, Watanabe M, et al. Functional requirement of gp130-mediated signaling for growth and survival of mouse primordial germ cells in vitro and derivation of embryonic germ (EG) cells. Development 1996;122:1235-1242.[Abstract/Full Text]

  16. Labosky PA, Barlow DP, Hogan BL. Mouse embryonic germ (EG) cell lines: transmission through the germline and differences in the methylation imprint of insulin-like growth factor 2 receptor (Igf2r) gene compared with embryonic stem (ES) cell lines. Development 1994;120:3197-3204.[Abstract/Full Text]

  17. Shamblott MJ, Axelman J, Wang S, et al. Derivation of pluripotent stem cells from cultured human primordial germ cells. Proc Natl Acad Sci U S A 1998;95:13726-13731. [Erratum, Proc Natl Acad Sci U S A 1999;96:1162.][Abstract/Full Text]

  18. McLaren A. Mammalian germ cells: birth, sex, and immortality. Cell Struct Funct 2001;26:119-122.[CrossRef][ISI][Medline]

  19. Executive summary. In: Scientific and medical aspects of human reproductive cloning. Washington, D.C.: National Academy Press, 2002.

  20. Hammes A, Guo JK, Lutsch G, et al. Two splice variants of the Wilms' tumor 1 gene have distinct functions during sex determination and nephron formation. Cell 2001;106:319-329.[ISI][Medline]

  21. Teixeira J, Maheswaran S, Donahoe PK. Mullerian inhibiting substance: an instructive developmental hormone with diagnostic and possible therapeutic applications. Endocr Rev 2001;22:657-674.[Abstract/Full Text]

  22. Little M, Holmes G, Bickmore W, van Heyningen V, Hastie N, Wainwright B. DNA binding capacity of the WT1 protein is abolished by Denys-Drash syndrome WT1 point mutations. Hum Mol Genet 1995;4:351-358.[Abstract]

  23. Miller RW, Fraumeni JF Jr, Manning MD. Association of Wilms's tumor with aniridia, hemihypertrophy and other congenital malformations. N Engl J Med 1964;270:922-927.[ISI]

  24. Koufos A, Grundy P, Morgan K, et al. Familial Wiedemann-Beckwith syndrome and a second Wilms tumor locus both map to 11p15.5. Am J Hum Genet 1989;44:711-719.[ISI][Medline]

  25. Parker KL, Schedl A, Schimmer BP. Gene interactions in gonadal development. Annu Rev Physiol 1999;61:417-433.[CrossRef][ISI][Medline]

  26. Shen WH, Moore CC, Ikeda Y, Parker KL, Ingraham HA. Nuclear receptor steroidogenic factor 1 regulates the Mullerian inhibiting substance gene: a link to the sex determination cascade. Cell 1994;77:651-661.[ISI][Medline]

  27. Arango NA, Lovell-Badge R, Behringer RR. Targeted mutagenesis of the endogenous mouse MIS gene promoter: in vivo definition of genetic pathways of vertebrate sexual development. Cell 1999;99:409-419.[ISI][Medline]

  28. Watanabe K, Clarke TR, Lane AH, Wang X, Donahoe PK. Endogenous expression of Mullerian inhibiting substance in early postnatal rat Sertoli cells requires multiple steroidogenic factor-1 and GATA-4-binding sites. Proc Natl Acad Sci U S A 2000;97:1624-1629.[Abstract/Full Text]

  29. Parker KL, Schimmer BP. Transcriptional regulation of the genes encoding the cytochrome P-450 steroid hydroxylases. Vitam Horm 1995;51:339-370.[ISI][Medline]

  30. Leers-Sucheta S, Morohashi K, Mason JI, Melner MH. Synergistic activation of the human type II 3beta-hydroxysteroid dehydrogenase/delta5-delta4 isomerase promoter by the transcription factor steroidogenic factor-1/adrenal 4-binding protein and phorbol ester. J Biol Chem 1997;272:7960-7967.[Abstract/Full Text]

  31. Lala DS, Rice DA, Parker KL. Steroidogenic factor I, a key regulator of steroidogenic enzyme expression, is the mouse homolog of fushi tarazu-factor I. Mol Endocrinol 1992;6:1249-1258.[Abstract]

  32. Achermann JC, Ito M, Hindmarsh PC, Jameson JL. A mutation in the gene encoding steroidogenic factor-1 causes XY sex reversal and adrenal failure in humans. Nat Genet 1999;22:125-126.[CrossRef][ISI][Medline]

  33. Taketo M, Parker KL, Howard TA, et al. Homologs of Drosophila fushi-tarazu factor 1 map to mouse chromosome 2 and human chromosome 9q33. Genomics 1995;25:565-567.[CrossRef][ISI][Medline]

  34. Nachtigal MW, Hirokawa Y, Enyeart-VanHouten DL, Flanagan JN, Hammer GD, Ingraham HA. Wilms' tumor 1 and Dax-1 modulate the orphan nuclear receptor SF-1 in sex-specific gene expression. Cell 1998;93:445-454.[ISI][Medline]

  35. Parker KL, Schimmer BP, Schedl A. Genes essential for early events in gonadal development. Cell Mol Life Sci 1999;55:831-838.[CrossRef][ISI][Medline]

  36. Ito M, Yu R, Jameson JL. DAX-1 inhibits SF-1-mediated transactivation via a carboxy-terminal domain that is deleted in adrenal hypoplasia congenita. Mol Cell Biol 1997;17:1476-1483.[Abstract]

  37. Crawford PA, Dorn C, Sadovsky Y, Milbrandt J. Nuclear receptor DAX-1 recruits nuclear receptor corepressor N-CoR to steroidogenic factor 1. Mol Cell Biol 1998;18:2949-2956.[Abstract/Full Text]

  38. Zazopoulos E, Lalli E, Stocco DM, Sassone-Corsi P. DNA binding and transcriptional repression by DAX-1 blocks steroidogenesis. Nature 1997;390:311-315.[CrossRef][ISI][Medline]

  39. Donahoe PK, Crawford JD, Hendren WH. Mixed gonadal dysgenesis, pathogenesis, and management. J Pediatr Surg 1979;14:287-300.[ISI][Medline]

  40. Robboy SJ, Miller T, Donahoe PK, et al. Dysgenesis of testicular and streak gonads in the syndrome of mixed gonadal dysgenesis: perspective derived from a clinicopathologic analysis of twenty-one cases. Hum Pathol 1982;13:700-716.[ISI][Medline]

  41. Telvi L, Lebbar A, Del Pino O, Barbet JP, Chaussain JL. 45,X/46,XY mosaicism: report of 27 cases. Pediatrics 1999;104:304-308.[Abstract/Full Text]

  42. Mroz K, Carrel L, Hunt PA. Germ cell development in the XXY mouse: evidence that X chromosome reactivation is independent of sexual differentiation. Dev Biol 1999;207:229-238.[CrossRef][ISI][Medline]

  43. Koopman P, Munsterberg A, Capel B, Vivian N, Lovell-Badge R. Expression of a candidate sex-determining gene during mouse testis differentiation. Nature 1990;348:450-452.[CrossRef][ISI][Medline]

  44. McElreavy K, Vilain E, Abbas N, et al. XY sex reversal associated with a deletion 5' to the SRY "HMG box" in the testis-determining region. Proc Natl Acad Sci U S A 1992;89:11016-11020.[Abstract]

  45. Wagner T, Wirth J, Meyer J, et al. Autosomal sex reversal and campomelic dysplasia are caused by mutations in and around the SRY-related gene SOX9. Cell 1994;79:1111-1120.[ISI][Medline]

  46. Ottolenghi C, Veitia R, Quintana-Murci L, et al. The region on 9p associated with 46,XY sex reversal contains several transcripts expressed in the urogenital system and a novel doublesex-related domain. Genomics 2000;64:170-178.[CrossRef][ISI][Medline]

  47. De Santa Barbara P, Bonneaud N, Boizet B, et al. Direct interaction of SRY-related protein SOX9 and steroidogenic factor 1 regulates transcription of the human anti-Mullerian hormone gene. Mol Cell Biol 1998;18:6653-6665.[Abstract/Full Text]

  48. Donahoe PK, Crawford JD, Hendren WH. True hermaphroditism: a clinical description and a proposed function for the long arm of the Y chromosome. J Pediatr Surg 1978;13:293-301.[ISI][Medline]

  49. Nihoul-Fekete C, Lortat-Jacob S, Cachin O, Josso N. Preservation of gonadal function in true hermaphroditism. J Pediatr Surg 1984;19:50-55.[ISI][Medline]

  50. Berkovitz GD, Fechner PY, Marcantonio SM, et al. The role of the sex-determining region of the Y chromosome (SRY) in the etiology of 46,XX true hermaphroditism. Hum Genet 1992;88:411-416.[ISI][Medline]

  51. Torres M, Gomez-Pardo E, Dressler GR, Gruss P. Pax-2 controls multiple steps of urogenital development. Development 1995;121:4057-4065.[Abstract/Full Text]

  52. Sanyanusin P, McNoe LA, Sullivan MJ, Weaver RG, Eccles MR. Mutation of PAX2 in two siblings with renal-coloboma syndrome. Hum Mol Genet 1995;4:2183-2184.[ISI][Medline]

  53. Donahoe PK, Hendren WH. Pelvic kidney in infants and children: experience with 16 cases. J Pediatr Surg 1980;15:486-495.[ISI][Medline]

  54. Stark K, Vainio S, Vassileva G, McMahon AP. Epithelial transformation of metanephric mesenchyme in the developing kidney regulated by Wnt-4. Nature 1994;372:679-683.[CrossRef][ISI][Medline]

  55. Vainio S, Heikkila M, Kispert A, Chin N, McMahon AP. Female development in mammals is regulated by Wnt-4 signalling. Nature 1999;397:405-409.[CrossRef][ISI][Medline]

  56. Ma L, Benson GV, Lim H, Dey SK, Maas RL. Abdominal B (AbdB) Hoxa genes: regulation in adult uterus by estrogen and progesterone and repression in mullerian duct by the synthetic estrogen diethylstilbestrol (DES). Dev Biol 1998;197:141-154.[CrossRef][ISI][Medline]

  57. Goodman FR, Scambler PJ. Human HOX gene mutations. Clin Genet 2001;59:1-11.[CrossRef][ISI][Medline]

  58. de Santa Barbara P, Roberts DJ. Tail gut endoderm and gut/genitourinary/tail development: a new tissue-specific role for Hoxa13. Development 2002;129:551-561.[Abstract/Full Text]

  59. Herbst AL, Ulfelder H, Poskanzer DC. Adenocarcinoma of the vagina: association of maternal stilbestrol therapy with tumor appearance in young women. N Engl J Med 1971;284:878-881.[ISI][Medline]

  60. Miller C, Degenhardt K, Sassoon DA. Fetal exposure to DES results in de-regulation of Wnt7a during uterine morphogenesis. Nat Genet 1998;20:228-230.[CrossRef][ISI][Medline]

  61. Belville C, Josso N, Picard JY. Persistence of Mullerian derivatives in males. Am J Med Genet 1999;89:218-223.[CrossRef][ISI][Medline]

  62. MacLaughlin DT, Teixeira J, Donahoe PK. Reproductive tract development -- new discoveries and future directions. Endocrinology 2001;142:2167-2172.[Full Text]

  63. Haqq CM, Donahoe PK. Regulation of sexual dimorphism in mammals. Physiol Rev 1998;78:1-33.[Abstract/Full Text]

  64. Cohen-Haguenauer O, Picard JY, Mattei MG, et al. Mapping of the gene for anti-Mullerian hormone to the short arm of human chromosome 19. Cytogenet Cell Genet 1987;44:2-6.[ISI][Medline]

  65. Visser JA, McLuskey A, van Beers T, et al. Structure and chromosomal localization of the human anti-mullerian hormone type II receptor gene. Biochem Biophys Res Commun 1995;215:1029-1036.[CrossRef][ISI][Medline]

  66. Hutson JM, Chow DW, Ng WD. Persistent Mullerian duct syndrome with transverse testicular ectopia. Pediatr Surg Int 1987;2:191-194.[ISI]

  67. Lubahn DB, Joseph DR, Sullivan PM, Willard HF, French FS, Wilson EM. Cloning of human androgen receptor complementary DNA and localization to the X chromosome. Science 1988;240:327-330.[ISI][Medline]

  68. Trapman J, Klaassen P, Kuiper GG, et al. Cloning, structure and expression of a cDNA encoding the human androgen receptor. Biochem Biophys Res Commun 1988;153:241-248.[ISI][Medline]

  69. Stocco DM. Tracking the role of a star in the sky of the new millennium. Mol Endocrinol 2001;15:1245-1254.[Abstract/Full Text]

  70. Di Cerbo A, Biason-Lauber A, Savino M, et al. Combined 17alpha-hydroxylase/17,20-lyase deficiency caused by Phe93Cys mutation in the CYP17 gene. J Clin Endocrinol Metab 2002;87:898-905.[Abstract/Full Text]

  71. Morissette J, Rheaume E, Leblanc JF, Luu-The V, Labrie F, Simard J. Genetic linkage mapping of HSD3B1 and HSD3B2 encoding human types I and II 3 beta-hydroxysteroid dehydrogenase/delta 5-delta 4-isomerase close to D1S514 and the centromeric D1Z5 locus. Cytogenet Cell Genet 1995;69:59-62.[ISI][Medline]

  72. Peltoketo H, Luu-The V, Simard J, Adamski J. 17Beta-hydroxysteroid dehydrogenase (HSD)/17-ketosteroid reductase (KSR) family: nomenclature and main characteristics of the 17HSD/KSR enzymes. J Mol Endocrinol 1999;23:1-11.[Abstract/Full Text]

  73. Andersson S, Berman DM, Jenkins EP, Russell DW. Deletion of steroid 5 alpha-reductase 2 gene in male pseudohermaphroditism. Nature 1991;354:159-161.[CrossRef][ISI][Medline]

  74. Jenkins EP, Hsieh CL, Milatovich A, et al. Characterization and chromosomal mapping of a human steroid 5 alpha-reductase gene and pseudogene and mapping of the mouse homologue. Genomics 1991;11:1102-1112.[ISI][Medline]

  75. Donahoe PK, Crawford JD, Hendren WH. Management of neonates and children with male pseudohermaphroditism. J Pediatr Surg 1977;12:1045-1057.[ISI][Medline]

  76. Lee MM, Donahoe PK, Silverman BL, et al. Measurements of serum müllerian inhibiting substance in the evaluation of children with nonpalpable gonads. N Engl J Med 1997;336:1480-1486.[Abstract/Full Text]

  77. Lee MM, Donahoe PK, Hasegawa T, et al. Mullerian inhibiting substance in humans: normal levels from infancy to adulthood. J Clin Endocrinol Metab 1996;81:571-576.[Abstract]

  78. Rey R, Mebarki F, Forest MG, et al. Anti-Mullerian hormone in children with androgen insensitivity. J Clin Endocrinol Metab 1994;79:960-964.[Abstract]

  79. Imperato-McGinley J, Zhu YS. Androgens and male physiology: the syndrome of 5alpha-reductase-2 deficiency. Mol Cell Endocrinol 2002;198:51-59.[CrossRef][ISI][Medline]

  80. Speiser PW. Congenital adrenal hyperplasia owing to 21-hydroxylase deficiency. Endocrinol Metab Clin North Am 2001;30:31-59.[ISI][Medline]

  81. Pucholt V, Fitzsimmons JS, Gelsthorpe K, Reynolds MA, Milner RD. Location of the gene for 21-hydroxylase deficiency. J Med Genet 1980;17:447-452.[Abstract]

  82. White PC, New MI, Dupont B. Molecular cloning of steroid 21-hydroxylase. Ann N Y Acad Sci 1985;458:277-287.[ISI][Medline]

  83. Merke DP, Bornstein SR, Avila NA, Chrousos GP. NIH conference: future directions in the study and management of congenital adrenal hyperplasia due to 21-hydroxylase deficiency. Ann Intern Med 2002;136:320-334.[Abstract/Full Text]

  84. Chua SC, Szabo P, Vitek A, Grzeschik KH, John M, White PC. Cloning of cDNA encoding steroid 11 beta-hydroxylase (P450c11). Proc Natl Acad Sci U S A 1987;84:7193-7197.[Abstract]

  85. Mornet E, Dupont J, Vitek A, White PC. Characterization of two genes encoding human steroid 11 beta-hydroxylase (P-450(11) beta). J Biol Chem 1989;264:20961-20967.[Abstract/Full Text]

  86. New MI. Prenatal treatment of congenital adrenal hyperplasia: author differs with technical report. Pediatrics 2001;107:804-804. [Erratum, Pediatrics 2001;107:1450.][Full Text]

  87. Schnitzer JJ, Donahoe PK. Surgical treatment of congenital adrenal hyperplasia. Endocrinol Metab Clin North Am 2001;30:137-154.[ISI][Medline]



IBN.RU - Информационная Деловая
Сеть Rambler's Top100 TopList Муковисцидоз





Разместите здесь ссылку!