|
| ||||||
|
Genetic Center |
версия для печати Молекулярная генетика болезней кератинаThe molecular Genetics of Keratin DisordersFrances J.D.Smith Am. J. Clin. Dermatol., 2003, 4(5):347-364 Epithelial Genetics Group, Human Genetics Unit, University of Dundee, Ninewells Hospital and Medical School, Dundee, DD1 9SY, UK. E-mail: fjsmith@hgmp.mrc.ac.uk
Содержание:1.Кератины 1.1.Структура, функция, экспрессия 1.2.Ансамбль кератиновых филаментов 1.3.Характер экспрессии кератинов 2.Болезни кератинов 2.1.Эпидермолиз буллезный простой (Epidermolisis Bullosa Simplex-EBS) 2.1.1.EBS Доулинга-Меара 2.1.2.EBS Вебера-Коккейна 2.1.3.EBS Кобнера 2.1.4.Идентификация мутаций кератина при EBS 2.1.5.Другие формы EBS с мутациями в генах К1 и К4 2.2.Буллезная врожденная ихтиозиформная кератодерма 2.2.Буллезный ихтиоз Сименса 2.4.Врожденная пахионихия (Pachyonychia Congenita-PC) 2.4.1.PC-1 2.4.2.PC-2 2.4.3.Множественная стеатоцитома 2.5.Кератодерма ладонно-подошвенная 2.5.1. Эпидермолитическая ладонно-подошвенная кератодерма (EPPK) 2.5.2.Мягкая EPPK 2.5.3.Диффузная не-эпидермолитическая ладонно-подошвенная кератодерма 2.5.4.Ихтиозис гистрикс Курта-Маклина 2.5.5.Фокальная не-эпидермолитическая ладонно-подошвенная кератодерма 2.6.Не-эпидермальные болезни кератинизации 2.6.1.Белый спонгиальный невус 2.6.2.Эпителиальная дистрофия роговицы Меесманна 2.6.3.Криптогенный цирроз 2.6.4.Кератины трихоцитов (волос) 3.Молекулярно-генетическая диагностика болезней кератинизации 3.1.Псевдогены 4.Будущие исследования 5.Пренатальная диагностика 6.Международная база данных по филаментам 7.Заключение 1.КЕРАТИНЫ1.1.Структура, функция и экспрессияЦитоскелет всех эукариотических клеток состоит из 3 основных структур: микрофиламентов (5-7 нанометров в диаметре), микротрубочек (около 25 нанометров в диаметре), и средних филаментов (около 10 нанометров в диаметре). Микрофиламенты и микротрубочки вовлекаются в различные клеточные события, включая клеточное деление, сокращение, ориентация, поляризация и фиксация. Однако функция средних филаментов во многом оставалась неизвестной до тех пор, пока не были идентифицированы патологические мутации кератинов при различных болезнях , сопровождающихся ломкостью кожи. Это позволило показать, что средние филаменты представляют собой истинный внутренний структурный цитоскелет клетки, делающий их нечувствительными к ежедневному стрессу и физической травме. Известно более чем 50 белков средних филаментов, которые подразделяются на 6 типов на основе гомологии последовательности нуклеотидов, тканевой специфичности и иммунологических характеристик. В цитоплазме эпителиальных клеток кератины средних филаментов формируют сложные лучи от ядра к цитоплазменной мембране. В этой позиции они взаимодействуют со специфическими белковыми соединениями - десмосомами, на сайтах межклеточной мембраны и гемидесмосомами на поверхности базальных клеток. Кератины, из которых примерно 30 цитокератинов и кератинов трихоцитов (кератины волос/ногтей), образуют группы белков (тип 1 и 2) средних филаментов. Анализ соответствующих последовательностей генома человека позволил идентифицировать некоторые новые кератины, увеличив их общее число до 49. Тип 1, кислые кератины (К9-К20) образуют кластер генов на хромосоме 17q12-q21, и тип 2, щелочные кератины (К1-К8), образующие кластер генов на хромосоме 12q11-q14. Кератины K18 являются исключением и картированы в качестве генных кластеров тип 2, на хромосоме 12. Структурно кератины состоят из альфа-спирали в качестве центрального стержня домена из 310 аминокислот, фланкированных не-спиралевидными головками (VI) и сужением (V2) в доменах. 2. БОЛЕЗНИ КЕРАТИНА.2.1. Простой буллезный эпидермолис (epidermolysis bullosa simplex - EBS): первое идентифицированное заболевание кератина у человека.Простой буллезный эпидермолиз (EBS) был первым наследственным заболеванием, ассоциированным с мутациями кератина. На сегодняшний день известно 18 мутаций в генах кератина, связанных с болезнями человека. EBS – один из трех основных форм буллезного эпидермолиза (EB). Другие формы включают перекрестный ( junctional ) EB и дистрофический EB. Классификация буллезного эпидермолиза основывается на ультраструктурном уровне отслаивания внутри кожи, оценке клинических признаков и типе наследования (аутосомно-доминантный или рецессивный). Характерным для интроэпидермального образования пузырей является цитолиз в субнуклеарном регионе базальных кератиноцитов. EBS обычно наследуется по аутосомно-доминантному типу, хотя существуют редкие случаи рецессивных форм (см. ниже). В целом EBS считается самой легкой формой буллезного эпидермолиза с частотой примерно 1:50 000 [13-15]. Три наиболее частых типа аутосомно-доминантного буллезного эпидермолиза: Доулинга-Меара (раздел 2.1.1), Вебера-Коккейна (раздел 2.1.2) и Кобнера (раздел 2.1.3), рассматриваются ниже. 2.1.1 EBS Доулинга-Меара ( EBS Dowling-Meara )Вариант Доулинга-Меара (EBS-DM) - OMIM 131760 - считается наиболее тяжелой формой EBS [16]. Образование пузырей может быть интенсивным при рождении, а заболевание – фатальным в первые месяцы жизни. Таким образом, ранний диагноз является важным для лечения в этот критический период. EBS-DM наследуется по аутосомно-доминантному типу, почти все случаи – спорадические. Пузыри образуют герпетиформные скопления на туловище и на проксимальных отделах конечностей и заживают с минимальными повреждениями однако может оставаться милиарная сыпь.Повреждения слизистой оболочки ротовой полости довольно часты, могут повреждаться зубы и пищевод. Наиболее частым является прогрессирующий гиперкератоз ладоней и подошв. Ногти могут быть дистрофичными или отслаиваться (17). Гистологически EBS-DM отличается от других форм EBS. Аномальная скученность филаментов кератина наблюдается в базальных кератиноцитах. Это приводит к цитолизу базальных клеток и образованию интраэпидермальных пузырей (18-20). Таблица 1. Характер экспрессии кератинов.
2.1.2. EBS Вебера-Коккейна ( EBS Weber-Cockayne )При форме EBS Вебера-Коккейна (EBS-WC, OMIM 131800) пузыри образуются преимущественно на руках и стопах (21-22). По данным национальных регистров в Великобритании и США предполагается, что это наиболее частая форма EBS (14-15). Пузыри развиваются в раннем или позднем детстве, когда ребенок учится ходить. Пузыри индуцируются травмой при минимальной физической активности, но могут развиваться и спонтанно. Пузыри иногда кровоточат, но заживают без повреждений или милиарных образований. Утолщения могут образовываться поверх областей повторяющихся пузырей. Часто наблюдается гипергидроз стоп, и тогда может быть мягкий гиперкератоз ладоней и подошв (23). Наблюдается заметная сезонная вариабельность с болеее частым образованием пузырей в теплые летние месяцы. 2.1.3. EBS Кобнера (EBS-Kobner, OMIM 131900)Является субтипом, сходным с EBS-WC, но с генерализованным образованием пузырей на всех частях тела и в ротовой полости (24). Однако различия между EBS-WC и EBS-K часто отсутствуют, так как образование пузырей у многих пациентов с EBS-WC не ограничивается только стопой и кистью. Пузыри развиваются при рождении, в раннем детстве, и заживают без повреждений. Вторичная бактериальная инфекция является наиболее частой проблемой. Может наблюдаться умеренный гиперкератоз стоп и ладоней, и часто – гипергидроз стоп. Ногти повреждаются незначительно. Могут быть сезонные вариации, наподобие EBS-WC, с более частым образованием пузырей в летнее время. 2.1.4. Идентификация мутаций кератина при EBS (25-50).Используя трансгенных животных (25-26) и материал от пациентов (27-29) показано, что в основе EBS лежат мутации генов KRT-5 и KRT-14, кодирующих кератины K-5 и K-14 соответственно (см. табл. 2 и табл. 3). Таблица 2. Веб-сайты для исследования и диагностики кератиновых болезней.
2.1.5. Другие формы EBS с мутациями при дефектах кератинов K-5 и K-14.EBS с мелкоточечной пигментацией. Описан как вариант EBS-K (51). Генерализованные пузыри развиваются при рождении и в течение раннего детства, не оставляя повреждений. Кожа имеет крапчатую окраску в связи с аномалиями пигментации, которые уменьшаются с возрастом, становясь совершенно неразличимыми у взрослых. Другие признаки включают атрофию кожи на туловище и конечностях, гиперкератоз ладоней и подошв и дистрофию ногтей. Мутации в генах кератинов K-5 и K-14 были исследованы у пациентов. Одинаковая мутация в гене кератина K-5 (L25P) была обнаружена во всех семи случаях, описанных в то время. Как эта мутация продуцирует пигментные изменения, неизвестно. Рецессивный EBS. В редких случаях EBS может проявляться как рецессивный признак (R-EBS, OMIM 601001) в случаях кровнородственных браков. Мутации кератина K-14 идентифицированы у нескольких пациентов. В первом случае очень легкий EBS-WC-подобный фенотип был обнаружен у гомозиготы. Гетерозиготные пациенты были клинически здоровыми. Патологическая мутация была гомозиготной миссенс-мутацией, ответственной за мотив инициации геликса- K-14 (54). Были описаны также более тяжелые генерализованные формы образования пузырей. Полная потеря экспрессии K-14 была показана у этих пациентов гистохимическим методом, иммуноэлектронной микроскопией и иммуноблотингом. Экспрессия K-5 была нормальной. Были описаны также другие типы мутаций (табл.3). Таблица 3. Мутации генов кератина человека на январь 2002.
BCIE = буллезная врожденная ихтиозиформная эритродермия DNEPPK = диффузная не-эпидермолитическая ладонно-подошвенная кератодерма EBS = простой буллезный эпидермолиз EPPK = эпидермолитическая ладонно-подошвенная кератодерма FNEPPK = фокальная не-эпидермолитическая ладонно-подошвенная кератодерма IBS = буллезный ихтиоз Сименса MECD = эпителиальная дистрофия роговицы Меесмана PC = врожденная пахионихия SM = множественная стеатоцистома WSN = белый спонгиозный невус 2.2. БУЛЛЕЗНАЯ ВРОЖДЕННАЯ ИХТИОЗИФОРНАЯ ЭРИТРОДЕРМИЯ.Буллезная врожденная ихтиозифорная эритродермия (BCIE) также известна как эпидермолитический гиперкератоз (EHK, OMIM 113800), для которого характерны эритродерма, образование пузырей при рождении, ведущие к тяжелому генерализованному гиперкератозу у взрослых. Цитолиз развивается в супрабазальных слоях эпидермиса, что совершенно отличается от процесса образования пузырей на уровне базальных клеток при EBS. Ультраструктурно базальные клетки нормальные, а в супрабазальных клетках обнаруживается аномальное скучивание тонофиламентов, ведущие к коллапсу цитоскелета в этих клетках (62-63). Мутации в кератинах описаны в таблицах 2 и3. Мутации в кератинах K-5, K-14, K-1, K-10 рассматриваются в работах 64-77. Другой вариант BCIE описан как аннулярный эпидермолитический ихтиоз (AEI), гистологически и клинически сходный с BCIE [78]. В дополнении к образованию пузырей, эритемы и гиперкератоза, типичных для BCIE, на туловище и проксимальных отделах конечностей развиваются ряд аннулярных и полициклических эритематозных гиперкератотических пятен. У ряда пациентов с AEI были обнаружены мутации в K-10 (79-80). У пациентов со сходным фенотипом, BCIE с циклическим ихтиозом в последнее время были обнаружены мутации K-1. 2.3. Буллезный ихтиоз Симменса ( Ichthyosis Bullosa of Siemens ).Буллезный ихтиоз Сименса (IBS, OMIM 146800) – тип эпидермолитического гиперкератоза с эпидермальным утолщением и поверхностным образованием пузырей преимущественно на сгибательных поверхностях (83). Характерное шелушение поверхностных слоев эпидермиса при IBS отличает это заболевание от BCIE. Аггрегация тонофиламентов и ограниченный цитолиз верхнего шиповидного и гранулярно-клеточного слоев эпидермиса были отмечены у пациентов с IBS (84). Наиболее вероятным кандидатом гена для IBS является K2E в сочетании с K-10. Использование молекулярных технологий для скрининга всех генов-кандидатов возможно для подтверждения диагноза у пациентов, в отношении которых затруднена клиническая дифференциальная диагностика. 2.4. Врожденная пахионихия (Pachyoniсhya Congenita -PC).Врожденная пахионихия сочетает ряд эктодермальных дисплазий с гипертрофической дистрофией ногтей в качестве основного клинического признака. PC обычно наследуется аутосомно-доминантно и разделяется на два основных типа (89): PC-1 Ядассона-Левандовски тип ( Jadassohn-Lewandowsky type, OMIM 167200 [90] ) и PC-2 Джексона-Лоулера тип ( Jackson-Lawler type, OMIM 167210 [91] ). Оба типа связаны с мутациями в генах кератина. Мутации в кератине 2 типа, K6A и ее партнера K16 (тип 1) продуцируют PC-1. Мутации в K17 и ее соответствующего партнера K6B (кератин тип 2), продуцируют PC-2. 2.4.1. PC-1.Характеризуется гипертрофической дистрофией ногтей, фокальной не-эпидермолитической ладонно-подошвенной кератодермией, и лейкокератозом ротовой полости (рис.4). Лейкокератоз может быть менее распространенным при PC-2, но в то же время варьирует при обеих формах. При электронной микроскопии кожи ладоней и подошв, тонофиламенты в супрабазальных кератиноцитах выглядят аномальными в виде конденсированных пучков, но в то же время морфологически отличаются от аггрегатов при EBS-DM и BCIE (92-93). Эти аномальные пучки кератина являются результатом экспрессии пары мутантных генов K6a/K16. Эти кератины экспрессируются в ногтевом ложе, слизистых и эпидермисе ладоей и подошв (12), а эпителиальные ткани поражаются при PC-1. Несколько случаев мутаций в К16 были обнаружены при необычных PC –1-фенотипах. Во-первых, в случае поздно проявляющегося PC –1, при которых не было кожных и ногтевых изменений до 6 лет. Миссенс-мутации были обнаружены в центральном 2b-домене К16 (97). Мутации в этом регионе K14 приводят к легким EBS-фенотипам. Во-вторых, случай, описанный как односторонний ладонно-подошвенный веррукозный невус был вызван мозаичной мутацией (98). Хотя гистологически наблюдалось сходство с эпидермолитической ладонно-подошвенной кератодермией (EPPK, см. ниже), повреждения наблюдались только на одной стороне туловища и следовали линиям Блашко. Это пример необычного фенотипа без явного гена-кандидата, а мозаицизм был вызван постзиготической мутацией. 2.4.2. PC-2.При PC-2 вдобавок к гиперторофической дистрофии ногтей характерным является развитие множественных кист волосяных сальных желез в пубертате. Это основное отличие двух типов PC. Мягкая фокальная не-эпидермолитическая ладонно-подошвенная кератодермия, врожденные зубы, pili torti (скрученные волосы) и повреждения слизистой ротовой полости могут иметь место. Основные трудности в дифференциальной диагностике между PC-1 и PC-2 отмечаются в раннем детстве. Гены-кандидаты включают ген KRT17, экспрессирующийся в волосяных фолликулах, ногтевом ложе и сальных железах (100-101). В семьях с PC-2 была обнаружена гетерозиготная миссенс-мутация в К17 (табл.2). Второй ген для PC-2 был идентифицирован в K6b (103). 2.4.3. Стеатоцистома множественная.Стеатоцистома множественная (OMIM 184500), вариант PC-2, характеризуется множественными кистами волосяных сальных желез наподобие PC-2 и легкими повреждениями ногтей. Миссенс-мутации были обнаружены в трех семьях в К17 (104-105). В одном случае мутация была единственной (R94C) (104). Различные фенотипы (PC-2 или стеатоцистома множественная) могут возникать в результате одной и той же мутации, что указывает на влияние других генетических и внешнесредовых факторов. 2.5. Ладонно-подошвенная кератодермия.Наследственная ладонно-подошвенная кератодермия включает ряд заболеваний, клинически трудно различимых. Гиперкератоз ладони и подошв может быть диффузным, фокальным или точечным, а также сочетаться с другими эктодермальными признаками (106). Различные формы ладонно-подошвенной кератодермы вызываются мутациями в генах кератинов, например, эпидермолитическая ладонно-подошвенная кератодермия вызывается мутацией в K9, фокальная не-эпидермолитическая ладонно-подошвенная кератодермия – в К16. Мутации в К16 также являются причиной PC-1, как описано выше. Большинство мутаций в K1 вызывают BCIE, но в некоторых необычных случаях ладонно-подошвенной кератодермии также обнаружены мутации К1. Эти находки демонстрируют гетерогенность фенотипа, который может быть получен в результате мутаций в разных генах кератинов. 2.5.1. Эпидермолитическая ладонно-подошвенная кератодермия (EPPK, OMIM 144200)Характеризуется эпидермолитическим гиперкератозом эпидермиса ладоней и подошв, являясь аутосомно-доминантным, рано проявляющимся заболеванием (107). Гистологически проявляется цитолизом в супрабазальных слоях утолщенного эпидермиса и аггрегатами кератиновых филаментов при электронной микроскопии (108). Различная локализация диффузного утолщенного желтого гиперкератоза ладоней и подошв без других клинических признаков указывает на KRT9 в качестве гена-кандидат из-за его специфической экспрессии в супрабазальных клетках кожи (73-74). Исследование первых семей с EPPK позволило картировать кластер кератина I типа на хромосоме 17 (109) (табл.3). 2.5.2. Мягкая EPPK.В трех семьях с мягкой формой ЕРРК мутация KRT9 была исключена в качестве гена-кандидата, но была идентифицирована мутация сайта сплайсинга в экзоне 6, что приводит к инсерции 18 пар оснований (112). Генотипирование всех трех семей показало эффект родоначальника. Фенотип болезни в этих семьях совершенно отличался от BCIE. 2.5.3. Диффузная не-эпидермолитическая ладонно-подошвенная кератодермия.Необычная мутация была описана при PPK, форме Унна-Тоста ( Unna-Thost form ). Была обнаружена мисссенс-мутация KRT1 (113). 2.5.4. Ихтиозис гистрикс Курта-Макклина ( Ichthyosis Hystrix Curth-Macklin ).Случай тяжелой деформирующей ладонно-подошвенной кератодермии, проявляющейся в нескольких поколениях одной афроамериканской семьи был недавно описан как форма ихтиозис гистрикс Курта-Макклина (IHCM, OMIM 146590). Гистологически кератиновые филаменты в шиповидных и гранулярных слоях выглядели аномальными. Анализ сцепления различных генов-кандидатов показал сложную ко-сегрегацию болезни с типом 2 кератинового кластера на хромосоме 12 (114-115). 2.5.5. Фокальная не-эпидермолитическая пальмоплантарная кератодермия (FNEPPK).Характеризуется присутствием фокального гиперкератоза в местах сдавления ладоней и подошв, сходные с PC-1, а также минимальными признаками со стороны ногтей и ротовой полости. У двух пациентов обнаружены гетерозиготные миссенс-мутации К16 (116), сходными с мутациями, вызывающими PC-1. Это демонстрирует сложность мутаций кератина (117). 2.6. Не-эпидермальные кератиновые болезни.2.6.1. Белый спонгиозный невус.Белый спонгиозный невус Кенона (White sponge nevus of Canon, OMIM 193900) проявляется как доброкачественное, аутосомно-доминантное заболевание, поражающее сквамозный (пластинчатый) эпителий. Белые спонгиозные пятна наблюдаются в основном в ротовой полости (оральный лейкокератоз), но могут также присутствовать на слизистой оболочке пищеводе и на слизистой аногенитальной области (118). Заболевание развивается в раннем детстве. Обнаружены аггрегации тонофиламентов как дефекта К4 и К13 (119-120). Эти кератины специфически экспрессируются в эпителии слизистой. Обнаружены гетерозиготные делеции трех пар оснований в К4 (121), а также гетерозиготные миссенс-мутации в К13(122), инсерциии трех пар оснований в К4 (123) и миссенс-мутации в К13 (124-125) (табл. 3). 2.6.2. Эпителиальная дистрофия роговицы Меесмана ( Meesmann’s Epithelial Corneal Dystrophy ).Эпителиальная дистрофия роговицы Меесмана (MESD, OMIM 122100) – аутосомно-доминантное заболевание эпителия роговицы. Впервые описано в большой немецкой семье (127). Характеризуется интраэпителиальными кистами в передних отделах роговицы, видимыми с помощью щелевой лампы. Эти кисты наполнены внутриклеточными включениями, возможно, аггрегатами кератина (128). Начинается в раннем детстве, но может быть отсрочено до позднего детского/раннего взрослого возраста. Заболевание часто асимптомное, а зрение не нарушено, однако пациенты могут быть чувствительны к контактным линзам из-за хрупкости эпителия роговицы. Кератины К3 и К12 специфически экспрессируются в эпителиальных клетках роговицы (12, 129). У потомков немецкой семьи, впервые описанной Меесманом, ген MECD был картирован в локусе KRT12. Были обнаружены и другие мутации (131-135). 2.6.3. Криптогенный цирроз.Простые эпителиальные кератины К8 и К18 экспрессируются в печени, поджелудочной железе, эпителии кишечника. Мутации К18 впервые обнаружены у трансгенных мышей с хроническим гепатитом (136). Анализировали также ДНК от пациентов с заболеваниями печени неизвестного происхождения. У одного из 28 пациентов с криптогенным циррозом была идентифицирована мутация в кератине К18 (H127L). В дальнейшем исследовали пациентов трех групп: с криптогенным заболеванием печени, не-криптогенным заболеванием печени и случайную выборку пациентов из отделения гематологии. 5 мутаций в К8 обнаружены в 1 группе. Мутации в К8 или К18 могут предрасполагать пациентов к поздно наступающим болезням печени. 2.6.4. Кератины трихоцитов (клеток волос).Тип 1 и 2 трихоцитов или гены кератина волос локализуются рядом с цитокератинами на хромосомах 17 и 12 соответственно. Эти кератины образуют тесно переплетенные пучки полимеров, из которых образуются волосы, ногти и твердые окончания сосочков языка. Они имеют такую же основную структуру, как эпителиальные кератины, но очень богаты цистеиновыми остатками, допускающими высокую степень дисульфидных кросс-связей. Предполагается, что мутации в этих генах могут продуцировать аномальные фенотипы волос. Монилетрикс (OMIM 158000).Редкое аутосомно-доминантное заболевание с варьирующими фенотипами от мягкой потери волос до почти полного облысения. Волосы фрагильные (ломкие) и при световой микроскопии обнаруживают периодическое истончение, придающее волосам вид четок. При электронной микроскопии дефекты обнаружены в микрофибрилярной структуре волосяного ствола. Описаны цитолиз и скучивание тонофиламентов в кортикальных клетках мешочка волосяного фолликула, а также фолликулярный кератоз и аномалии ногтей, что связано с мутациями в генном кластере на хромосоме 12 (табл.2,3). 4. БУДУЩИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.Это касается других форм заболеваний, например EBS с мышечной дистрофией, вызванной мутацией в плектине, связанном с цитоскелетом в высокомолекулярном белке (152-153). Мутации в одном из белков десмосомы, плакофилине-1, ведут к фенотипу эктодермальной дисплазии с хрупкостью кожи (154). 5. ПРЕНАТАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА.Предварительный диагноз может быть поставлен путем биопсии кожи плода для диагностики присутствия пузырей. Однако более приемлема детекция мутаций геномной ДНК. В случаях, когда известна семейная мутация, проведение пренатальной диагностики возможно путем получения ворсин хориона на 11-12 неделе беременности для мутационного анализа (см. табл. 2). Такие исследования проведены у пациентов с BCIE (156-157), EBS (40) и у одного пациента с PC-1 в Великобритании и США (табл.2). 6. БАЗА ДАННЫХ ПО МУТАЦИЯМ МЕЖУТОЧНЫХ ФЕЛАМЕНТОВ.Суммарное число мутаций кератинов на январь 2002 года показано в таблице 3 и основано на исследованиях международного консорциума ( www.interfil.org ). 7. ЗАКЛЮЧЕНИЕ.За последние 10 лет мутации в 18 кератиновых генах были ассоциированы с эпителиальными заболеваниями. Это привело к исправлению классификации этих болезней и диагностике их методами молекулярной генетики в сочетании с клиническим исследованием и гистологическим анализом. Современные исследования сфокусированны на разработке лечения с целью уменьшения или полного исчезновения симптомов, вызванных этими болезнями. References1. Hesse M, Magin TM, Weber K. Genes for intermediate filament proteins and the draft sequence of the human genome: novel keratin genes and a surprisingly high number of pseudogenes related to keratin genes 8 and 18. JCell Sci 2001:114(Pt 14): 2569-75 2. Romano V, Bosco P, Rocchi M, et al. Chromosomal assignments of human type I and type II cytokeratin genes to different chromosomes. Cytogenet Cell Genet 1988:48: 148-51 3. Rosenberg M, RayChaudhury A, Shows T, et al. A group of type I keratin genes on human chromosome 17: characterization and expression. Mol Cell Biol 1988:8: 722-36 4. Rosenberg M, Fuchs E, LeBeau MM, et al. Three epidermal and one simple epithelial type II keratin genes map to human chromosome 12. Cytogenet Cell Genet 1991;57:33-8 5. Waseem A, Alexander CM, Steel JB, et al. Embryonic simple epithelial keratins 8 and 18: chromosomal location emphasizes difference from other keratin pairs. New Biol 1990; 2 (5): 464-78 6. Smith TA, Strelov SV, Burkhard P, et al. Sequence comparisons of intermediate filament chains: evidence of a unique functional/structural role for coiled-coil segment 1A and linker LI. J Struct Biol 2002; 137: 128-45 7. Steinert PM, Yang JM, Bale SJ, et al. Concurrence between the molecular overlap regions in keratin intermediate filaments and the locations of keratin mutations in genodermatoses. Biochem Biophys Res Commun 1993; 197 (2): 840-8 8. Steinert PM. Structure, function and dynamics of keratin intermediate filaments. J Invest Dermatol 1993; 100 (6): 729-34 9. Steinert PM, North AC, Parry DA. Structural features of keratin intermediate filaments. J Invest Dermatol 1994; 103 (5 Suppl.): 19S-24S 10. Steven AC, Hainfeld JF, Trus BL, et al. Epidermal keratin filaments assembled in vitro have masses per unit length that scale according to average subunit mass: structural basis for homologous packing of subunits in intermediate filaments. J Cell Biol 1983; 97: 1939-44 11. Herrmann H, Strelkov SV, Feja B, et al. The intermediate filament protein consensus motif of helix 2B: its atomic structure and contribution to assembly. J Mol Biol 2000; 298 (5): 817-32 12. Moll R, Franke WW, Schiller DL, et al. The catalog of human cytokeratins: patterns of expression in normal epithelia, tumors and cultured cells. Cell 1982; 31 (I): 11-24 13. McKenna KE, Walsh MY, Bingham EA. Epidermolysis bullosa in Northern Ireland. Br J Dermatol 1992; 127 (4): 318-21 14. Fine JD. Epidermolysis bullosa: application of epidemiologic principles to the study of a group of rare diseases via a disease registry. Dermatol Clin 1995; 13 (3): 659-70 15. Horn HM, Priestley GC, Eady RA, et al. The prevalence ofepidermolysis bullosa in Scotland. Br J Dermatol 1997; 136 (4): 560-4 16. Dowling GB, Meara RH. Epidermolysis bullosa resembling juvenile dermatitis herpetiformis. Br J Dermatol 1954; 66: 139-43 17. Fine JD, Bauer EA, Briggaman RA, et al. Revised clinical and laboratory criteria for subtypes of inherited epidermolysis bullosa: a consensus report by the subcommittee on diagnosis and classification of the national epidermolysis bullosa registry. J Am Acad Dermatol 1991; 24: 119-35 18. Anton-Lamprecht I, Schnyder UW. Epidermolysis bullosa herpetiformis Dowling-Meara: report of a case and pathomorphogenesis. Dermatologica 1982; 164: 221-35 19. Ishida-Yamamoto A, McGrath JA, Chapman SJ, et al. Epidermolysis bullosa simplex (Dowling-Meara type) is a genetic disease characterized by an abnormal keratin filament network involving keratins K5 and K14. J Invest Dermatol 1991; 97 (6): 959-68 20. McGrath JA, Ishida-Yamamoto A, Tidman MJ, et al. Epidermolysis bullosa simplex (Dowling-Meara): a clinicopathological review. Br J Dermatol 1992; 126: 421-30 21. Weber F. Recurrent bullous eruptions on the feet in a child. Proc R Soc Med 1926; 19: 72 22. Cockayne E. Recurrent bullous eruptions of the feet. Br J Dermatol 1938; 55: 358-62 23. Pearson RW. Clinicopathologic types of epidermolysis bullosa and their nondermatological complications. Arch Dermatol 1988; 124 (5): 718-25 24. Koebner H. Hereditaere Aniage zur Blasenbildung (Epidermolysis bullosa hereditaria). Dtsch Med Wochenschr 1886; 12: 21-2 25. Coulombe PA, Hutton ME, Vassar R, et al. A function for keratins and a common thread among different types of epidermolysis bullosa simplex diseases. J Cell Biol 1991; 115: 1661-74 26. Vassar R, Coulombe PA, Degenstein L, et al. Mutant keratin expression in transgenic mice causes marked abnormalities resembling a human genetic skin disease. Cell 1991; 64: 365- 80 27. Bonifas JM, Rothman AL, Epstein Jr EH. Epidermolysis bullosa simplex: evidence in two families for keratin gene abnormalities. Science 1991; 254 (5035):1202-5 28. Coulombe PA, Hutton ME, Letai A, et al. Point mutations in human keratin 14 genes of epidermolysis bullosa simplex patients: genetic and functional analysis. Cell 1991; 66: 1301-11 29. Lane EB, Rugg EL, Navsaria H, et al. A mutation in the conserved helix termination peptide of keratin 5 in hereditary skin blistering. Nature 1992; 356 (6366): 244-6 30. Albers K, Fuchs E. The expression of mutant epidermal keratin cDNAs transfected in simple epithelial and squamous cell carcinoma lines. J Cell Biol 1987; 105:791-806 31. Albers K, Fuchs E. Expression of mutant keratin cDNAs in epithelial cells reveals possible mechanisms for initiation and assembly of intermediate filaments. J Cell Biol 1989; 108: 1477-93 32. Coulombe PA, Chan YM, Albers K, et al. Deletions in epidermal keratins leading to alterations in filament organization in vivo and in intermediate filament assembly in vitro. J Cell Biol 1990; 111 (6 Pt 2): 3049-64 33. Bonifas JM, Rothman AL, Epstein E. Linkage of epidermolysis bullosa simplex to probes in the region of keratin gene clusters on chromosomes 12q and 17q [abstract]. J Invest Dermatol 1991; 96: 550a 34. Ryynanen M, Knowlton RG, Uitto J. Mapping of epidermolysis-bullosa simplex mutation to chromosome-12. Am J Hum Genet 1991; 49 (5): 978-84 35. Hoyheim B, Gedde-Dahl T, Olaisen B. Linkage studies in epidermolysis bullosa simplex [abstract]. J Invest Dermatol 1992; 98: 397a 36. McKenna KE, Hughes AE, Nevin NC. Linkage of epidermolysis bullosa simplex to keratin gene loci. J Med Genet 1992; 29: 568-70 37. Corden LD, McLean WH. Human keratin diseases: hereditary fragility of specific epithelial tissues. Exp Dermatol 1996; 5 (6): 297-307 38. Cooper DN, Krawczak M. Human gene mutation. Oxford: BIOS Scientific Publishers Ltd, 1993 39. Hut PH, v d Vlies P, Jonkman MF, et al. Exempting homologous pseudogene sequences from polymerase chain reaction amplification allows genomic keratin 14 hotspot mutation analysis. J Invest Dermatol 2000; 114 (4): 616-9 40. Rugg EL, Baty D, Shemanko CS, et al. DNA based prenatal testing for the skin blistering disorder epidermolysis bullosa simplex. Prenat Diagn 2000; 20 (5):371-7 41. MullerFB, Anton-Lamprecht I, KusterW, etal. A premature stopcodon mutation in the 2B helix termination peptide of keratin 5 in a German epidermolysis bullosa simplex Dowling-Meara case. J Invest Dermatol 1999; 112 (6): 988-90 42. Rugg EL, Rachet-Prehu MO, Rochat A, et al. Donor splice site mutation in keratin 5 causes in-frame removal of 22 amino acids of H 1 and 1 A rod domains in Dowling-Meara epidermolysis bullosa simplex. Eur J Hum Genet 1999; 7 (3): 293-300 43. Livingston RJ, Sybert VP, Smith LT, et al. Expression of a truncated keratin 5 may contribute to severe palmar: plantar hyperkeratosis in epidermolysis bullosa simplex patients. J Invest Dermatol 2001; 116 (6): 970-4 44. Ehrlich P, Sybert VP, Spencer A, et al. A common keratin 5 gene mutation in epidermolysis bullosa simplex Weber-Cockayne. J Invest Dermatol 1995; 104 (5): 877-9 45. Chen MA, Bonifas JM, Matsumura K, et al. A novel three-nucleotide deletion in the helix 2B region of keratin 14 in epidermolysis bullosa simplex: DE375. Hum Molec Genet 1993; 2 (II): 1971-2 46. Shemanko CS, Mellerio JE, Tidman MJ, et al. Severe palmo-plantar hyperkeratosis in Dowling-Meara epidermolysis bullosa simplex caused by a mutation in the keratin 14 gene (KRT14). J Invest Dermatol 1998; 111 (5): 893-5 47. Cummins RE, Klingberg S, Wesley J, et al. Keratin 14 point mutations at codon 119 of helix 1A resulting in different epidermolysis bullosa simplex pheno-types. J Invest Dermatol 2001; 117 (5): 1103-7 48. Chen H, Bonifas JM, Matsumura K, et al. Keratin 14 gene mutations in patients with epidermolysis bullosa simplex. J Invest Dermatol 1995; 105 (4): 629-32 49. Hu ZL, Smith L, Martins S, et al. Partial dominance of a keratin 14 mutation in epidermolysis bullosa simplex: increased severity of disease in a homozygote. J Invest Dermatol 1997; 109 (3): 360-4 50. Stephens K, Ziotogorski A, Smith L, et al. Epidermolysis bullosa simplex: a keratin 5 mutation is a fully dominant allele in epidermal cytoskeleton function. Am J Hum Genet 1995; 56 (3): 577-85 51. Fischer T, Gedde-Dahl Jr T. Epidermolysis bullosa simplex and mottled pigmentation: a new dominant syndrome: I. clinical and histological features. Clin Genet 1979; 15 (3): 228-38 52. Uttam J, Hutton E, Coulombe PA, et al. The genetic basis ofepidermolysis bullosa simplex with mottled pigmentation. Proc NatI Acad Sci U S A 1996; 93 (17):9079-84 53. Irvine AD, Rugg EL, Lane EB, et al. Molecular confirmation of the unique phenotype of epidermolysis bullosa simplex with mottled pigmentation. Br J Dermatol 2001; 144 (I): 40-5 54. Hovnanian A, Pollack E, Hilal L, et al. A missense mutation in the rod domain of keratin 14 associated with recessive epidermolysis bullosa simplex. Nat Genet 1993; 3: 327-32 55. Chan Y, Anton-Lamprecht I, Yu QC, et al. A human keratin 14 "knockout": the absence of K 14 leads to severe epidermolysis bullosa simplex and a function for an intermediate filament protein. Genes Dev 1994; 8 (21): 2574-87 56. Corden LD, Mellerio JE, Gratian MJ, et al. Homozygous nonsense mutation in helix 2 of K14 causes severe recessive epidermolysis bullosa simplex. Hum Mutat 1998; 11: 279-85 57. Rugg EL, McLean WHI, Lane EB, et al. A functional "knock-out" for human keratin 14. Genes Dev 1994; 8 (21): 2563-73 58. Jonkman MF, Heeres K, Pas HH, et al. Effects of keratin 14 ablation on the clinical and cellular phenotype in a kindred with recessive epidermolysis bullosa simplex. J Dermatol 1996; 107: 764-9 59. Batta K, Rugg EL, Wilson NJ, et al. A keratin 14 'knockout' mutation in recessive epidermolysis bullosa simplex resulting in less severe disease. Br J Dermatol 2000; 143 (3): 621-7 60. Lloyd C, Yu QC, Cheng J, et al. The basal keratin network of stratified squamous epithelia: defining K15 function in the absence of K14. J. Cell Biol 1995; 129 (5): 1329-44 61. Peters B, Kirfel J, Bussow H,.et al. Complete cytolysis and neonatal lethality in keratin 5 knockout mice reveal its fundamental role in skin integrity and in epidermolysis bullosa simplex. Mol Biol Cell 2001; 12 (6): 1775-89 62. Anton-Lamprecht I. Genetically induced abnormalities of epidermal differentiation and ultrastructure in ichthyosis and epidermolysis: pathogenesis, heterogeneity, fetal manifestations, and prenatal diagnosis. J Invest Dermatol 1983; 81 (1 Suppl.): 149s-56s 63. Ishida-Yamamoto A, McGrath JA, Judge MR, et al. Selective involvement of keratins Kl and K10 in the cytoskeletal abnormality of epidermolytic hyperker-atosis (bullous congenital ichthyosiform erythroderma). J Invest Dermatol 1992; 99: 19-26 64. Fuchs E, Esteves RA, Coulombe PA. Transgenic mice expressing a mutant K10 gene reveal the likely genetic basis for epidermolytic hyperkeratosis. Proc NatI Acad Sci U S A 1992; 89: 6906-10 65. Bonifas JM, Bare JW, Chen MA, et al. Linkage of the epidermolytic hyperkeratosis phenotype and the region of the type II keratin gene cluster on chromosome 12. J Invest Dermatol 1992; 99: 524-7 66. Compton JG, DiGiovanna JJ, Santucci SK, et al. Linkage of epidermolytic hyperkeratosis to the type II keratin gene cluster on chromosome 12q. Nature Genet 1992;1: 301-5 67. Cheng J, Syder AJ, Yu Q-C, et al. The genetic basis of epidermolytic hyperkeratosis: a disorder of differentiation-specific epidermal keratin genes. Cell 1992; 70:811-9 68. Chipev CC, Korge BP, Markova N, et al. A leucine-proline mutation in the HI subdomain of keratin 1 causes epidermolytic hyperkeratosis. Cell 1992; 70:821-8 69. Rothnagel JA, Dominey AM, Dempsey LD, et al. Mutations in the rod domains of keratins 1 and 10 in epidermolytic hyperkeratosis. Science 1992; 257: 1128-30 70. Kremer H, Lavrijsen AP, McLean WH, et al. An atypical form of bullous congenital ichthyosiform erythroderma is caused by a mutation in the LI 2 linker region of keratin 1. J Invest Dermatol 1998; 111 (6): 1224-6 71. DiGiovanna JJ, BaleSJ. Epidermolytic hyperkeratosis: applied molecular genetics. J Invest Dermatol 1994; 102 (3): 390-4 72. Yang JM, Nam K, Kirn SW, et al. Arginine in the beginning of the 1 A rod domain of the keratin 10 gene is the hot spot for the mutation in epidermolytic hyperkeratosis. J Dermatol Sci 1999; 19 (2): 126-33 73. Knapp AC, Franke WW, Heid H, et al. Cytokeratin no. 9, an epidermal type I keratin characteristic of a special program of keratinocyte differentiation displaying body site specificity. J Cell Biol 1986; 103: 657-67 74. Moll I, HeidH, Franke WW, etal. Distribution of a special subset of keratinocytes characterized by the expression of Cytokeratin 9 in adult and fetal human epidermis of various body sites. Differentiation 1987; 33: 254-65 75. Paller AS, Syder AJ, Chan YM, et al. Genetic and clinical mosaicism in a type of epidermal nevus. N Engi J Med 1994; 331 (21): 1408-15 76. Moss C, Jones DO, Blight A, et al. Birthmark due to cutaneous mosaicism for keratin 10 mutation [letter]. Lancet 1995; 345 (8949): 596 77. Nomura K, Umeki K, Hatayama I, et al. Phenotypic heterogeneity in bullous congenital ichthyosiform erythroderma: possible somatic mosaicism for keratin gene mutation in the mildly affected mother of the proband. Arch Dermatol 2001; 137(9): 1192-5 78. Sahn EE, Weimer Jr CE, Garen PD. Annular epidermolytic ichthyosis: a unique phenotype. J Am Acad Dermatol 1992; 27 (2 Pt 2): 348-55 79. Joh GY, Traupe H, Metze D, et al. A novel dinucleotide mutation in keratin 10 in the annular epidermolytic ichthyosis variant of bullous congenital ichthyosiform erythroderma. J Invest Dermatol 1997; 108 (3): 357-61 80. Suga Y, Duncan KO, Heald PW, et al. A novel helix termination mutation in keratin 10 in annular epidermolytic ichthyosis, a variant of bullous congenital ichthyosiform erythroderma. J Invest Dermatol 1998; 111 (6): 1220-3 81. Sybert VP, Francis JS, Corden LD, et al. Cyclic ichthyosis with epidermolytic hyperkeratosis: a phenotype conferred by mutations in the 2B domain of keratin Kl. Am J Hum Genet 1999; 64 (3): 732-8 82. Michael EJ, Schneiderman P, Grossman ME, et al. Epidermolytic hyperkeratosis with polycyclic psoriasiform plaques resulting from a mutation in the keratin 1 gene. Exp Dermatol 1999; 8 (6): 501-3 83. Siemens HW. Dichtung und Wahrheit liber die die "Ichthyosis bullosa". mit Bemerkungen zur Systematik der Epidermolysen. Arch Dermatol Syph (Bert) 1937; 175: 590-608 84. McLean WHI, Morley SM, Lane EB, et al. Ichthyosis bullosa of Siemens: a disease involving keratin 2e. J Invest Dermatol 1994; 103 (3): 277-81 85. Collin C, Moll R, Kubicka S, et al. Characterization of human Cytokeratin 2. an epidermal cytoskeleton protein synthesized late during differentiation. Exp Cell Res 1992; 202: 132-41 86. Steijien P, Kremer H, Vakilzadeh F, et al. Genetic linkage of the keratin type II gene cluster with ichthyosis bullosa of Siemens and with autosomal dominant ichthyosis exfoliativa. J Invest Dermatol 1994; 103: 282-5 87. Kremer H, Zeeuwen P, McLean WHI, et al. Ichthyosis bullosa of Siemens is caused by mutations in the keratin 2e gene. J Invest Dermatol 1994; 103 (3):286-9 88. Rothnagel JA, Traupe H, Wojcik S, et al. Mutations in the rod domain of keratin 2e in patients with ichthyosis bullosa of Siemens. Nat Genet 1994: 7 (4); 485-90 89. Gorlin RJ, Pindborg JJ, Cohen Jr MM. Syndromes of the Head and Neck. 2nd ed. New York: McGraw-Hill, 1976 90. Jadassohn J, Lewandowsky F. Pachyonychia congenita. Jacobs Ikonographia Dermatologica; vol 1. Berlin: Urban and Schwarzenberg, 1906 91. Jackson ADM, Lawler SD. Pachyonychia congenita: a report of six cases in one family. Ann Eugen 1951; 16: 142-6 92. McLean WHI, Rugg EL, Lunny DP, et al. Keratin 16 and keratin 17 mutations cause pachyonychia congenita. Nat Genet 1995; 9: 273-8 93. Smith FJD, Del Monaco M, Steijien PM, et al. Novel proline substitution mutations in keratin 16 in two cases of pachyonychia congenita type 1. Br J Dermatol 1999;141:1010-6 94. Bowden PE, Haley JL, Kansky A, et al. Mutation of a type II keratin gene (K6a) in pachyonychia congenita. Nat Genet 1995; 10: 363-5 95. Lin MT, Levy ML, Bowden PE, et al. Identification of sporadic mutations in the helix initiation motif of keratin 6 in two pachyonychia congenita patients: further evidence for a mutational hot spot. Exp Dermatol 1999; 8 (2): 115-9 96. Terrinoni A, Smith FJD, Didona B, et al. Novel and recurrent mutations in the genes encoding keratins K6a, K16 and K17 in thirteen cases of pachyonychia congenita. J Invest Dermatol 2001; 117 (6): 1391-6 97. Connors JB, Rahil AK, Smith FJD, et al. Delayed-onset pachyonychia congenita associated with a novel mutation in the central 2B domain of keratin 16. Br J Dermatol 2001; 144 (5): 1058-62 98. Terrinoni A, Puddu P, Didona B, et al. A mutation in the VI domain of K16 is responsible for unilateral palmoplantar verrucous nevus. J Invest Dermatol 2000; 114(6): 1136-40 99.Munro CS, Carter S, Bryce S, et al. A gene for pachyonychia congenita is closely linked to the keratin gene cluster on 17ql2-q21. J Med Genet 1994: 31: 675-8 100.Troyanovsky SM, Guelstein VI, Tchipysheva TA, et al. Patterns of expression of K17 in human epithelia: dependency on cell position. J Cell Sci 1989; 93:419-26 101.McGowan KM, Coulombe PA. Keratin 17 expression in the hard epithelial context of the hair and nail, and its relevance for the pachyonychia congenita pheno- type. J Invest Dermatol 2000; 114 (6): 1101-7 102.Smith FJD, Coleman CM, Bayoumy NM, et al. Novel keratin 17 mutations in pachyonychia congenita type 2. J Invest Dermatol 2001; 116 (5): 806-8 103. Smith FJD, Jonkman MF, van Goor H, et al. A mutation in human keratin K6b produces a phenocopy of the K17 disorder pachyonychia congenita type 2. Hum Mol Genet 1998; 7 (7): 1143-8 104. Covello SP, Smith FJD, Sillevis Smitt JH, et al. Keratin 17 mutations cause either steatocystoma multiplex or pachyonychia congenita type 2. Br J Dermatol 1998; 139:475-80 105. Smith FJD, Corden LD, Rugg EL, et al. Missense mutations in keratin 17 cause either pachyonychia congenita type 2 or a phenotype resembling steatocystoma multiplex. J Invest Dermatol 1997; 108 (2): 220-3 106. Ratnavel RC, Griffiths WA. The inherited palmoplantar keratodermas. Br J Dermatol 1997; 137 (4): 485-90 107. Vorner H. Zur Kenntniss des Keratoma hereditarium palmare et plantare. Arch Derm Syph 1901; 56: 3-31 108. Navsaria HA, Swensson 0, Ratnavel RC, et al. Ultrastructural-changes resulting from keratin-9 gene-mutations in 2 families with epidermolytic palmoplantar keratoderma. J Invest Dermatol 1995; 104 (3): 425-9 109. Reis A, Kuster W, Eckardt R, et al. Mapping of a gene for epidermolytic palmoplantar keratoderma to 'the region of acidic keratin gene cluster at 17ql2-q21. Hum Genet 1992:90: 113-6 110. Reis A, Hennies H-C, Langbein L, et al. Keratin 9 gene mutations in epidermolytic palmoplantar keratoderma (EPPK). Nat Genet 1994; 6: 174-9 111. Coleman CM, Munro CS, Smith FJD, et al. Epidermolytic palmoplantar keratoderma due to a novel type of keratin mutation, a 3 bp insertion in the keratin 9 helix termination motif. Br J Dermatol 1999; 140: 486-90 112. Hatsell SJ, Eady RA, Wennerstrand L, et al. Novel splice site mutation in keratin 1 underlies mild epidermolytic palmoplantar keratoderma in three kindreds. J Invest Dermatol 2001; 116 (4): 606-9 113. Kimonis V. DiGiovanna JJ, Yang J-M, et al. A mutation in the VI end domain of keratin 1 in non-epidermolytic palmar-plantar keratoderma. J Invest Dermatol 1994; 103 (6): 764-9 114. Sprecher E, Ishida-Yamamoto A, Becker OM, et al. Evidence for novel functions of the keratin tail emerging from a mutation causing ichthyosis hystrix. J Invest Dermatol 2001; 116(4); 511-9 115. Bonifas JM, Bare JW, Chen MA, et al. Evidence against keratin gene mutations in a family with ichthyosis hystrix Curth-Macklin. J Invest Dermatol 1993; 101 (6): 890-1 116. Shamsher MK, Navsaria HA, Stevens HP, et al. Novel mutations in keratin 16 gene underly focal non-epidermolytic palmoplantar keratoderma (NEPPK) in 2 families. Hum Mol Genet 1995; 4 (10); 1875-81 117. Smith FJD, Fisher MP, Healy E, et al. Novel keratin 16 mutations and protein expression studies in pachyonychia congenita type 1 and focal palmoplantar keratoderma. Exp Dermatol. 2000; 9: 170-7 118. Jorgenson RJ, Levin S. White sponge nevus. Arch Dermatol 1981; 117: 73-6 119. McGinnis JP, Turner JE. Ultrastructure of the white sponge nevus. Oral Surg 1975; 40(5): 644-51 120. Frithiof L, Banoczy J. White sponge nevus (leukoedema exfoliativum mucosae oris): ultrastructural observations. Oral Surg 1976; 41 (5): 607-22 121. Rugg EL, McLean WHI, Allison WE, et al. A mutation in the mucosal keratin K4 is associated with oral white sponge nevus. Nat Genet 1995; 11: 450-2 122. Richard G, DeLaurenzi V, DiDona B, et al. Keratin-13 point mutation underlies the hereditary mucosal epithelial disorder white sponge nevus. Nat Genet 1995; 11 (4): 453-5 123. Terrinoni A, Candi E, Oddi S, et al. A glutamine insertion in the I A alpha helical domain of the keratin 4 gene in a familial case of white sponge nevus. J Invest Dermatol 2000; 114 (2): 388-91 124. Terrinoni A, Rugg EL, Lane EB, et al. A novel mutation in the keratin 13 gene causing oral white sponge nevus. J Dent Res 2001; 80 (3): 919-23 125. Rugg E, Magee G, Wilson N, et al. Identification of two novel mutations in keratin 13 as the cause of white sponge naevus. Oral Dis 1999; 5 (4): 321-4 126. Munro CS. The clinical consequences of keratin gene defects. Dermatol Practice 1998; 6(6): 8-11 127. Meesmann A, Wilke F. Klinische und anatomische Untersuchungen ueber eine bisher unbekannte, dominant vererbte Epitheldystrophie der Hornhaut. Klin Mbi Augenheilk 1939; 103: 361-91 128. Tremblay M, Dube I. Meesmann's cornea) dystrophy: ultrastructural features. Can J Ophthalmol 1982; 17 (I): 24-8 129. Liu CY, Zhu G, Westerhausen-Larson A, et al. Cornea-specific expression of K12 keratin during mouse development. Curr Eye Res 1993; 12 (11): 963-74 130. Kao WW-Y, Liu C-Y, Converse RL, et al. Keratin 12 deficient mice have fragile corneal epithelia. Invest Ophthalmol Vis Sci 1996; 37: 2572-84 131. Irvine AD, Corden LD, Swensson 0, et al. Mutations in cornea-specific keratins K3 or K12 cause Meesmann's corneal dystrophy. Nat Genet 1997; 16: 184-7 132. Nishida K, Honma Y, Dota A, et al. Isolation and chromosomal localization of a cornea-specific human keratin 12 gene and detection of four mutations in Meesmann corneal epithelial dystrophy. Am J Hum Genet 1997; 61 (6):1268-75 133. Coleman CM, Hannush S, Covello SP. et al. A novel mutation in the helix termination motif of keratin K12 in a US family with Meesmann comeal dystrophy. Am J Ophthalmol 1999: 128 (6); 687-91 134. Corden LD, Swensson 0, Swensson B, et al. M |